Evaluación de la actividad antimicrobiana y tóxica de los extractos orgánicos de hojas de Tecoma fulva subsp. Arequipensis (cahuato)
DOI:
https://doi.org/10.46932/sfjdv4n6-030Keywords:
T. fulva subsp. arequipensis, actividad antimicrobiana, concentración mínima inhibitoria, concentración mínima bactericida, A. salinaAbstract
Introducción: La resistencia a los antimicrobianos, conducen a la búsqueda de nuevas alternativas en los vegetales para el tratamiento de enfermedades. Los extractos del género Tecoma han sido utilizados en la medicina tradicional y académica. En el Tecoma fulva subsp. arequipensis se investigará la actividad in vitro, con la finalidad de encontrar nuevos vegetales con sustancias químicas, que tengan actividad antimicrobiana y menor toxicidad. Objetivo: Evaluar el perfil fitoquímico, antimicrobiano y tóxico de los extractos orgánicos de las hojas de T. fulva subsp. arequipensis frente a patógenos de importancia clínica.
Métodos: Incluye la recolección, secado y maceración; los extractos orgánicos crudos de diferente polaridad fueron concentrados en rotaevaporador, se realizo el análisis fitoquímico; y la actividad antimicrobiana en bacterias: S. aureus ATCC 25923, E. faecalis ATCC 29212, E. coli ATCC 25922, K. pneumoniae ATCC 700603 y P. aeruginosa ATCC 27853. Como control positivo se usó gentamicina, la actividad toxica en A. salina. Resultados: Del screening fitoquímico permitió detectar la presencia de alcaloides, saponinas, terpenos, flavonoides, sesquiterpenlactonas, quinonas y coumarinas. Las cepas que mostraron alta sensibilidad al extracto con acetato de etilo fueron: E. coli ATCC 25922, con CIM de 6,25 mg/mL; CBM de 25,0 mg/mL y diámetro de zona de inhibición de 17,00 ± 0,19 y P. aeruginosa ATCC 27853 con CIM de 6,25 mg/mL. CBM de 12,5 mg/mL y diámetro de zona de inhibición de 18,00 ± 0,19 mm. Las cepas que mostraron mediana sensibilidad fueron: S. aureus ATCC 25923 con diámetro de zona de inhibición de 21,00 ± 1,05; E. faecalis ATCC 29212 con diámetro de zona de inhibición de 19,00 ± 0,26 y K. pneumoniae ATCC 700603, con diámetro de zona de inhibición de 18,00 ± 0,23 con CIM de 12,5 mg/mL y CBM de 25,00 mg/mL. La dosis letal media (DL50) en A. salina fue de 117,41 ppm considerado moderadamente tóxico. Conclusiones: La T. fulva subsp. Arequipensis actua como producto natural bioactivo, por contener sustancias químicas que inhiben el crecimiento de microorganismos patógenos.
References
Organización Mundial de la Salud. Estrategia de la OMS sobre medicina tradicional 2014-2023. 2013. ISBN 978924350698.
Sundas I. Zaheer K. Rizwana R. Anjum P. Evaluation of antibacterial activity of leaf extracts of Mansoa alliacea (Lam.) A: H. Gentry, Tecomaria capensis (Thumb) Space and Tecoma stans (L) Juss Ex. H. B. And K. Journal of biodiversity and environmental sciences. 2016. Vol. 9, N° 1: 69-75.
Sowjanya P. Srinivas P. Phytochemical investigation and antimicrobial properties of crude flower extract of Tecoma stans (L) juss. Ex. Kunth. Der-Pharmacia Lettre. 2017. 9(7): 24-34. ISSN 0975-5071. USA
Rajamurugan R. Thirunavukkrasu C. Sakthivel V. Sivashanmugam M. and Rghavan C. Phytochemical screening, antioxidant and antimicrobial activities of ethanolic extract of Tecoma stans flowers. International journal of pharms and bio sciences. 2013. 4(2): 124-130.
Vidhya R. Fleming T. Assessment of the Cytotoxic Potential of Tecoma castanifolia (D. Don) Melch Flower Extract Again MCF-7 Cell Line. American journal of ethno medicine. 2016. Vol. 3 N° 1: 001-005. ISSN: 2348-9502.
Kamilia F. El-sayeda A. Shahira M. Nagloa A. Antimicrobial and antioxidant activity of volatile constituents of the leaves of Tecoma smithii Will Wats. Global Journal of Medical Plant Research. 2016. 4(4): 16-22. ISSN 2074-0883.
Anburaj G. Marimuthu M. Rajasudha V. y Manikandan R. Phytochemical screening and GC-MS analysis of ethanolic extract of Tecoma stans (Family Bignoniaceae) Yellow Bell Flowers. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 2016. 5(4): 172-175.
Sunitha K. Preliminary phytochemical investigations and immune modulatory screening of methanol extract of Tecoma stans leaves. Journal of chemical and pharmaceutical Research. 2018. 10(7): 151-155. ISSN: 0975-7384.
Kunth against nine species of pathogenic bacteria. African journal of microbiology research. 2013. Vol. 7(5): 418-426.
Asto Rojas R. J. Efecto antibacteriano in vitro del aceite esencial de Schinus molle L. “molle” frente a bacterias gramnegativas y grampositivas. [Tesis]. 2014. Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Universidad Nacional de San Agustín Arequipa Perú.
Raju S. Kavimani S. Maheshwara Rao VU, Reddy KS, Kumar GV. Floral extract of Tecoma stans: a potent inhibitor of gentamicin-induced nephrotoxicity in vivo. 2012. Asian Pac J Trop Med.
Lagarto Parra A. Silva-Yhebra R, Guerra-Sardiñas I, Iglesias-Buela L. Comparative study of the assay of Artemia salina L. and the estimate of the medium lethal dose (LD50 value) in mice, to determine oral acute toxicity of plant extracts. 2011. Phytomedicine.
Finney D. J. (2018): The Median Lethal Dose and Its Estimation. Archives Toxicology Kunth against nine species of pathogenic bacteria. African journal of microbiology research. 2013. Vol. 7(5): 418-426.
Salem M. Gohar M. Camacho L. El Shanhorey N. and Salem A. Antioxidant and antibacterial activities of leaves and branches extracts of Tecoma stans (L) Juss ex Kunth against nine species of pathogenic bacteria. African journal of microbiology research. 2013. Vol. 7(5): 418-426.
Dash S. Das C. Sahoo D. And Sahoo A. Phytochemical composition anti-inflammatory and analgesic activities of Tecoma stans Linn. (Bignoniaceae). Nature of pharmaceutical technology. 2011. 1(2): 5-8 ISSN 2231-0436.
Sunitha K. Preliminary phytochemical investigations and immune modulatory screening of methanol extract of Tecoma stans leaves. Journal of chemical and pharmaceutical Research. 2018. 10(7): 151-155. ISSN: 0975-7384.
Ochoa K. Paredes L. Bejarano D. Silva R. Extraction characterization and evaluation of antibacterial activity of essential oil of Senecio graveolens Wedd (Wiskataya). Scientia agricultural. 2012. Vol. 3: 291-302.
Clinical and Laboratory Standars Institute (CLSI). Performance Standars for Antimicrobial Susceptibility Testing. 28th ed. CLSI supplement M100 (ISBN 1-56238-838-X [Print]; ISBN 1- 56238-839-8 [Electronic]). Clinical and Laboratory Standars Institute, 950 West Valley Road, Suite 2500, Wayne, Pennsylvania 19087 USA. 2018.
Vega M. Identificación parcial de principios activos de diez plantas medicinales del norte de México con actividad biológica contra bacterias patógenas de aislados clínicos y cepas de referencia. Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias Biológicas México, Subdirección de Estudios de Postgrado. Tesis doctoral. 2013.
Pimentel Ramírez E. Castillo Andamayo D. Quintana Del Solar, M. Maurtua Torres Dora. Villegas Vílchez León. Díaz Santisteban C. Efecto antibacteriano de extractos etanólicos de plantas utilizadas en las tradiciones culinarias andinas sobre microorganismos de la cavidad bucal. Universidad Peruana Cayetano Heredia. Lima, Perú. Rev Estomatol Herediana. Oct-Dic; 2015.
Avellaneda S. Rojas, N. Cuéllar A. Fonseca R. Actividad antibacteriana de Diphysa minutifolia Rose. Rev. Cubana de Plantas Medicinales (2005).
Rana N. Singh S. Dhakad A. Dhatt K. Coding phenological growth stages of yellow bells (Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth) based on BBCH scale and its implications for urban greening. Current Plant Biology 34 (2023) 100284.
Andrade C. Pinto J. Arenazas A. Rooting and propagation by stem cuttings of Tecoma fulva sp arequipensis and other native species of arequipa (Peru) using growth regulators. International Journal of Latest Trends in Engineering and Technology Vol.(16)Issue(1), pp.185-194 DOI:http://dx.doi.org/10.21172/1.171.26 e-ISSN:2278-621X. (2020).